1. Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю N 5319-91
2. Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю Тушек Мяса Птицы Птицепродуктов
3. Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю Производства Пищевой Продукции Из Рыбы

Инструкция по санитарно-микробиологическому контролю тушек, мяса птицы, птицепродуктов, яиц и яйцепродуктов на птицеводческих.

Скачать книгу Проект РД Инструкция по микробиологическому контролю производства. Микробиологический контроль должен проводиться заводскими лабораториями систематически. Он осуществляется на всех этапах технологического процесса, начиная с сырья и кончая готовым продуктом, на основании государственных стандартов (ГОСТ), технических условий (ТУ), инструкций, правил, методических указаний и другой нормативной документации, разработанной для каждой отрасли пищевой промышленности.. Санитарно - гигиенический контроль включает проверку чистоты воды, воздуха. Aug 12, 2017 - Микробиологический контроль при производстве лекарственных средств. Микробиологические нормативы для кондитерских изделий,.

Министерство здравоохранения Республики Беларусь Инструкция 4.2.10-22-1-2006 МЕТОДЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ПОМЕЩЕНИЙ В ОРГАНИЗАЦИЯХ ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СТЕРИЛЬНОСТИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ Минск – 2006 УТВЕРЖДЕНО Постановление Главного государственного санитарного врача Республики Беларусь 28 января 2006 г. №7 ИНСТРУКЦИЯ 4.2.10-22-1-2006 «МЕТОДЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ПОМЕЩЕНИЙ В ^ ОРГАНИЗАЦИЯХ ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СТЕРИЛЬНОСТИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ» ГЛАВА 1 ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ 1. Настоящая Инструкция устанавливает методы микробиологического контроля объектов внешней среды в организациях здравоохранения (воздуха, предметов мебели, приборов, оборудования и др.), с целью оценки санитарно-гигиенического состояния помещений, а также методы контроля стерильности изделий медицинского назначения (медицинского инструментария, зондов, катетеров, бужей, резиновых перчаток, шовного материала и др.). Настоящая Инструкция предназначена для специалистов организаций здравоохранения и других заинтересованных организаций.

Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю N 5319-91

Инструкция является обязательной к применению в ходе проведения микробиологических исследований эпидемически значимых объектов внешней среды в организациях здравоохранения (объекты, подвергнутые дезинфекции и стерилизации находящиеся в подготовленных к работе с пациентами операционных, перевязочных, процедурных кабинетах и др.). Перечень объектов, подлежащих микробиологическому контролю, периодичность и объем микробиологических исследований, определяются врачом-эпидемиологом. Микробиологические исследования объектов внешней среды в организациях здравоохранения проводятся в плановом порядке и по эпидемиологическим показаниям. Микробиологическому обследованию подвергаются эпидемически значимые объекты внешней среды, которые могут послужить факторами передачи микроорганизмов на кожные покровы, слизистые оболочки, раневые поверхности, а также способствующие микробной контаминации крови, инъекционных растворов.

Микробиологическому исследованию подвергаются предметы нарушающие целостность кожных покровов и слизистых оболочек, контактирующие с растворами для инъекций, раневой поверхностью: изделия медицинского назначения для проведения медицинских манипуляций на стерильных областях пациентов, хирургические перчатки, шовно-перевязочный материал, препараты для ухода за слизистыми оболочками пациентов, лекарственные формы для инъекций, операционное белье в операционных и перевязочных, катетеры, зонды, интубационные трубки и др. Отбор проб для микробиологических исследований должен проводиться в подготовленных к работе помещениях; во время оказания медицинской помощи пациентам отбор проб в этих помещениях не проводится.

ГЛАВА 2 ^ МЕТОДЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ВОЗДУШНОЙ СРЕДЫ 7. Микробиологическое исследование воздушной среды предусматривает: определение общего микробного числа (КОЕ/м 3); определение содержания Staphylococcus aureus (КОЕ/м 3); определение содержания дрожжеподобных и плесневых грибов, микобактерий туберкулеза, патогенных грамотрицательных бактерий и др. (по усмотрению врача-эпидемиолога).

Пробы воздуха отбирают аспирационным методом. Скорость протягивания воздуха зависит от модели используемого воздухозаборника. Количество пропущенного воздуха должно составлять по 1000 литров для определения общего содержания бактерий и для определения наличия золотистого стафилококка.

Исследование воздуха седиментационным методом допускается только для боксов при микробиологических исследованиях изделий медицинского назначения на стерильность. Метод заключается в седиментации микроорганизмов на плотные питательные среды в открытых чашках Петри. Чашки Петри с питательными средами устанавливают в зонах наиболее высокой вероятности контаминации воздуха. Критерии оценки микробной обсемененности воздуха приведены в приложении 1 к настоящей Инструкции.

ГЛАВА 3 ^ ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОБНОЙ ОБСЕМЕНЕННОСТИ ОБЪЕКТОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ 10. Бактериологическое исследование микробной обсемененности объектов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, бактерий группы кишечной палочки (далее – БГКП), синегнойной палочки и других микроорганизмов. Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки или марлевыми салфетками, размером 5х5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 5,0 мл стерильного раствора нейтрализатора.

При применении дезинфектантов, содержащих хлор или перекись водорода, в качестве увлажняющей жидкости следует использовать раствор нейтрализатора (1% пептонная вода + 3% ТВИН-80 + 0,5% тиосульфата натрия), при применении других - 1% пептонная вода + 3% ТВИН-80 + 0,3% лецитина. При использовании салфеток стерильный раствор нейтрализатора разливают в стерильные флаконы по 5,0 мл. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют нейтрализатором и, после протирания исследуемого объекта, помещают во флакон.

При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета; при контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100-200 см 2. Для выделения стафилококков делают посев смывной жидкости непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром (далее – ЖСА) и тампона в среду накопления, используя в качестве сред накопления бульон с 6,5% хлористого натрия, бульон с 1% глюкозы, разлитые в пробирки по 5 мл. Засеянные пробирки инкубируют при (37 + 1) 0С в течение 20-24 часов, после чего делают высев на ЖСА. Исследование на стафилококк. Посев на элективную среду (ЖСА, молочно - солевой или молочно - желточно - солевой агар). Засеянную среду выдерживают в термостате при (37 + 1) 0С в течение 48 часов. Учет результатов.

Стафилококк растет в виде круглых, блестящих, маслянистых, выпуклых пигментированных колоний. На средах, содержащих желток, золотистый стафилококк в 60-70% случаев образует радужный венчик вокруг колонии (положительная лецитовителлазная реакция). Для накопления культуры на скошенный агар отсевают не менее 2-х колоний, подозрительных на стафилококк, и, прежде всего, колонии, дающие положительную лецитовителлазную реакцию. При отсутствии на чашках таких колоний дальнейшему исследованию подвергаются пигментированные колонии, схожие по морфологии со стафилококком. При одновременном наличии на чашках колоний стафилококка, отличающихся по пигменту, следует исследовать не менее двух колоний различного вида.

Пробирки с посевом помещают в термостат при (37 + 1) 0С. После суточной инкубации у выделенных штаммов проверяют морфологические и тинкториальные свойства (окраска по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности.

Окраску по Граму проводят общепринятым методом. При микроскопии окрашенные по Граму стафилококки имеют вид фиолетово - синих кокков, располагающихся гроздьями или небольшими скоплениями ('кружево'). Плазмокоагулирующую активность определяют в реакции коагуляции плазмы (далее - РКП). С учетом результатов РКП и лецитовителлазной активности, может быть подтверждена принадлежность выделенного штамма к виду золотистого стафилококка и выдан соответствующий ответ. Если культура обладает только плазмокоагулирующей или только лецитовителлазной активностью, то для окончательного ответа требуется определение ферментации маннита в анаэробных условиях.

Ответ выдают в зависимости от результатов, полученных при определении признаков согласно приложению 2 к настоящей Инструкции. Тест ферментации маннита в анаэробных условиях. Суточную агаровую культуру засевают уколом в столбик полужидкой среды Гисса с маннитом, на поверхность среды наливают 1,5 мл стерильного вазелинового масла для создания анаэробных условий. Посевы инкубируют при (37 + 1) 0С, в течении 5 суток, ежедневно просматривают и ведут учет.

Положительной считается реакция изменения цвета среды. Реакция плазмокоагуляции ставится в соответствии с «Инструкцией по применению плазмы кроличьей цитратной сухой», выпускаемой предприятиями по производству бактерийных препаратов. Определение БГКП. К БГКП относятся факультативно-анаэробные, грамотрицательные, оксидазоотрицательные, не образующие спор палочки, сбраживающие лактозу (глюкозу) с образованием кислоты и газа при (37 + 1) 0С в течение 24-48 часов, в основном, являющиеся представителями родов Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Serratia (т.е. Учитываются цитратположительные и цитратотрицательные варианты БГКП).

Для выявления БГКП производят посев на среду обогащения, для чего тампон (марлевую салфетку) погружают в 10-20% желчный бульон или среду Кесслера. Через сутки инкубирования при (37 + 1) 0С делают пересев на среду Эндо. При отсутствии на среде Эндо колоний, типичных для БГКП (красных и темно-красных с металлическим блеском или без него, розовых или бледно-розовых), выдают заключение об отсутствии БГКП.

При наличии на среде Эндо характерных колоний из них готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют; выполняют пробу на оксидазу. Наличие в мазках грамотрицательных, оксидазоотрицательных палочек предполагает присутствие БГКП. Исследуемые колонии засевают на среду Гисса с лактозой или глюкозой. Инкубируют (37 + 1) 0С 24 часа. Первичный учет проводят через 4-6ч. При обнаружении кислоты и газа выдают положительный ответ.

При выявлении на среде Эндо мелких бесцветных колоний, подозрительных на наличие возбудителей кишечных инфекций, колонии снимают и изучают на принадлежность к патогенным микроорганизмам семейства Enterobacteriaceae. Определение синегнойной палочки. Синегнойная палочка грамотрицательная, облигатно-аэробная, не образующая спор палочка, оксидазоположительная, образующая сине-зеленый пигмент. Для выявления синегнойной палочки из среды Кесслера делают пересев на мясопептонный агар (далее – МПА) с фурагином, термостатируют (37 + 1) 0С в течение 48 часов. Колонии синегнойной палочки плоские, сине-зеленого цвета со специфическим ароматическим цветочным запахом. На среде Эндо колонии плоские, с неровными краями, от бледно-сиреневого, до темно-сиреневого цвета.

Дифференциальным признаком синегнойной палочки является ее способность окислять глюкозу в аэробных условиях и отсутствие таковой в анаэробных. Для этого исследуемую культуру засевают в 2 пробирки с 4 мл среды Хью-Лейфсона или полужидкой среды Гисса с глюкозой, в одну из которых вносится 0,5 мл вазелинового масла. Посевы инкубируют при (37 + 1) 0С до 4-х суток, ежедневно учитывается результат посева.

Изменение цвета среды в пробирке без вазелинового масла свидетельствует об окислении глюкозы. ГЛАВА 4 ^ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ 19. Правила отбора проб для контроля стерильности. Отбор проб на стерильность проводит уполномоченный представитель органа государственного санитарного надзора или обученный медицинский персонал организаций здравоохранения в стерильные емкости с соблюдением правил асептики непосредственно перед проведением манипуляций и операций. Для контроля стерильности используют следующие питательные среды: сахарный бульон Хоттингера (0,5 и 1% глюкозы); тиогликолевую среду; бульон Сабуро.

Обязателен посев изделий на 3 вышеуказанные среды. При посеве изделия или его части непосредственно в питательную среду количество среды в пробирке (колбе, флаконе и т.д.) должно быть достаточным для полного погружения изделия или его части. Посевы в бульон Хоттингера и тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 30-35 0С, среду Сабуро - при температуре 20-25 0С. Посевы инкубируют в термостате в течение 14 суток.

В организациях здравоохранения, имеющих централизованные стерилизационные отделения, контролю на стерильность подлежит не менее 1% от числа одновременно стерилизованных изделий одного вида. Количество отбираемых проб для контроля стерильности изделий медицинского назначения, стерилизованных радиационным и газовым методом в промышленных условиях определяется по формуле: 0, 4√n, где n -количество изделий в одной партии, при минимальном количестве проб – 3 и максимальном – 40. При неудовлетворительном результате исследования, отбирается удвоенное количество образцов для вторичного посева. Требования, обеспечивающие асептические условия при посевах на стерильность: 20.1. Требования к помещению: посев исследуемого материала рекомендуется проводить в боксах с ламинарным потоком воздуха. Эти боксы размещают в отдельных помещениях бактериологической лаборатории.

При отсутствии боксов с ламинарным потоком воздуха контроль стерильности проводят в боксированных помещениях (бокс с предбоксником). Требования предъявляемые к устройству боксированных помещений изложены в Санитарных правилах 17-129 РБ 2000 «Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами», утвержденных постановлением Главного государственного санитарного врача Республики Беларусь от 27 июля 2000 года, № 40; 20.2. Подготовка помещений бокса, инструментов и персонала к работе: ежедневно до проведения работы помещения бокса и предбоксника подвергают тщательной обработке. Стены, пол, поверхности рабочих мест, инвентаря протирают дезинфицирующим средством, зарегистрированным в Республике Беларусь. Внутреннюю поверхность бокса с ламинарным потоком воздуха обрабатывают так же, как и помещение бокса. Через 45-60 минут после обработки, в бокс вносят все необходимые для работы материалы и инструменты, кроме исследуемых образцов; перед внесением материалов в ламинарном боксе включают вентиляцию на время, достаточное для обеспечения полного обмена воздуха в нем; за 1,5-2,0 часа до начала работы в боксе и предбокснике на 1,0-1,5 часа включают бактерицидные лампы.

Работа в боксе осуществляется не ранее, чем через 15 минут после отключения бактерицидной лампы; инструменты, посуда и спецодежда, используемые в работе, должны быть стерильными; перед входом в бокс работники лаборатории тщательно моют руки теплой водой с мылом, обрабатывают кожным антисептиками по режиму хирургической антисептики, одевают в предбокснике на ноги бахилы, стерильные халаты, маски, шапочки, стерильные перчатки. Используемые антисептики должны быть из числа зарегистрированных в Республике Беларусь. В процессе посева в боксе регулярно проверяют обсемененность воздуха.

Для этого на рабочий стол ставят 2 чашки с МПА, открывая их на 15 минут, затем чашки помещают в термостат при температуре (37 +1) 0С на 48 часов. Допускается рост не более трех колоний неспорообразующих сапрофитов; в случае роста на чашках более 3 колоний проведение дальнейших работ в данном боксе запрещается, в нем дополнительно проводят тщательную обработку дезинфицирующим средством; 20.3. Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводят путем их погружения в питательные среды. В исключительных случаях, когда необходимо проверить стерильность инструмента больших размеров, пробы готовят методом смыва, стерильной марлевой салфеткой размером 5х5 см 2, предварительно увлаженной стерильным физиологическим раствором или стерильной дистиллированной водой.

Перед посевом исследуемые образцы вносят в предбоксник, предварительно снимая наружную мягкую упаковку. В предбокснике пакеты, биксы протирают снаружи с помощью стерильного пинцета (корнцанга) стерильной салфеткой (ватным тампоном), смоченной дезинфицирующим средством, перекладывают на стерильный лоток и оставляют на 30 минут. При поступлении изделий в мягкой упаковке, первый слой упаковки снимают в предбокснике, изделия во внутренней упаковке сразу переносят в бокс. Посевы на стерильность проводит бактериолог с помощью лаборанта. Посевы на стерильность: 21.1.

Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными средами. В случаях, если стерилизованные инструменты находящиеся в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели, ранорасширители и т.д.), производят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или стерильной водопроводной воде и погружают салфетку в пробирку с тиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов засевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро; 21.2.

Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю Тушек Мяса Птицы Птицепродуктов

Методика посева на стерильность игл и шприцев - для контроля на стерильность отбирают шприцы малой емкости (1,0 или 2,0 мл) в условиях бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают в пробирки с питательными средами (отдельно цилиндр, поршень, иглы); при необходимости контроля стерильности шприцев большой емкости (10, 20 мл и более) исследование производят методом смыва, при этом стерильной салфеткой, смоченной в стерильных физиологическом растворе или водопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца и погружают салфетку в питательную среду; 21.3. Исследование на стерильность систем переливания крови - от силиконовой трубки, ближе к игле, отрезают ножницами с помощью пинцета небольшие кусочки (1-2 см) и погружают в пробирки с питательными средами, иглу отдельно погружают в питательные среды; 21.4. Посев на стерильность катетеров, резиновых перчаток и др. Изделий из резины и пластикатов - контроль стерильности зондов, катетеров, резиновых перчаток и других изделий из резины производят путем полного погружения мелких изделий в питательные среды, от более крупных, с помощью стерильного пинцета, стерильными ножницами отрезают небольшие кусочки (1-2 см) и погружают в питательные среды; 21.5.

Посев на стерильность хирургического шовного материала - перед посевом, емкость с отобранными образцами шовного материала, в предбокснике протирают стерильной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим средством, зарегистрированным в Республике Беларусь, затем ее вносят в бокс; 21.6. Кетгут перед посевом подвергают специальной обработке для нейтрализации и отмывания нейтрализующего раствора. Моток кетгута, приготовленный для исследования, перекладывают стерильным корнцангом или пинцетом в стерильный 10% раствор гипосульфита натрия.

Раствор гипосульфита натрия готовят на дистиллированной воде, разливают в пробирки (колбы) по 20-30 мл, стерилизуют при 120 0С 30 минут. Кетгут выдерживают в растворе гипосульфита в течение 24 часов при комнатной температуре (возможно помутнение раствора за счет выпадения серы), затем перекладывают в пробирки с 20-30 мл стерильной дистиллированной воды, где также выдерживают в течение 24 часов при комнатной температуре. Непосредственно перед посевом моток кетгута извлекают стерильным пинцетом и перекладывают в стерильную чашку Петри, с помощью пинцета и ножниц его разрезают на мелкие кусочки длиной 1-2 см и разъединяют для прорастания микроорганизмов внутри кетгута; посев производят в 2 пробирки с тиогликолевой средой, 2 пробирки со средой Сабуро и 2 пробирки со средой Хоттингера, помещая в каждую пробирку по 4-5 отрезков исследуемого материала; 21.7. Шелк (лавсан) перед посевом помещают на 24 часа в стерильную дистиллированную воду при комнатной температуре. Перед посевом моток шелка (лавсана) перекладывают в стерильные чашки Петри, разрезают на отрезки, длиной 1-2 см.

Посев шелка производят так же, как и кетгута; 21.8. Исследование на стерильность аппаратов экстракорпорального кровообращения проводят после асептической сборки аппарата; контролю подлежат: смыв из аппарата, перфузат до перфузии, кровь после перфузии; стерильный физиологический раствор в количестве не менее 250 мл прогоняют через аппарат, подготовленный к операции, отбирают 100 мл раствора и засевают на питательные среды. Аналогично производят посев перфузата до перфузии и крови после перфузии; 21.9. Посев на стерильность перевязочного материала.

Бинты, ватные шарики, марлевые салфетки, турунды и т.п. Отбирают из разных мест бикса стерильным пинцетом. Мелкие изделия целиком погружают в пробирки с питательными средами. От бинтов (внутренних частей) и крупных марлевых салфеток, с помощью стерильных ножниц, отрезают кусочки и погружают в пробирки с питательными средами. На каждый вид перевязочного материала используют по 2 пробирки каждой среды; 21.10. Посев на стерильность хирургического белья - стерилизованными и фламбированными ножницами, с помощью пинцета, от хирургического белья отрезают небольшие кусочки ткани (завязка, внутренние швы и т.п.) и погружают в пробирки (колбы) с питательными средами, не касаясь краев пробирки (колбы); 21.11.

Инструкция По Санитарно-микробиологическому Контролю Производства Пищевой Продукции Из Рыбы

Учет результатов: материал стерилен при отсутствии роста во всех посевах, материал не стерилен при выявлении роста микрофлоры; 21.12. Посевы на стерильность других изделий медицинского назначения выполняются в зависимости от размера и назначения изделия по методикам, аналогичным описанным выше.

Похожие рефераты: Настоящая Инструкция по проведению паспортизации санитарно-технического состояния условий и охраны труда (далее Инструкция) распространяется. Одобрено методической комиссией агроэкологического факультета 07. 2008 (протокол №10) Достижение необходимого санитарно-микробиологического состояния производства невозможно без предотвращения его инфицирования на всех. Настоящие методические указания распространяются на воду водоемов, используемых или намечаемых к использованию в качестве централизованного. Проверка состояния санитарно-бытовых помещений, организации питьевого водоснабжения Республика Беларусь, 247434, Гомельская область, г. Светлогорск, ул. Авиационная, д.

2-б Об организации контроля состояния работников Белорусской железной дороги на предмет нахождения в алкогольном опьянении или в состоянии. Т е с т ы по биохимии для студентов санитарно-гигиенического факультета на 2004-2005 уч г Просим оказать консультативную помощь и провести государственную санитарно-гигиеническую экспертизу с выдачей санитарно-гигиенического.